La coloration des frottis sanguins permet d’identification des leucocytes grâce à leurs caractéristiques propres mises en évidence par un colorant approprié, ainsi que l’observation de la morphologie des érythrocytes et des plaquettes.

1. S/AbdessemedS/Abdessemed
Par S / Abdessemed
Coloration et
Examen des
frottis sanguin

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But
• La coloration des frottis sanguins
permet d’identification des leucocytes
grâce à leurs caractéristiques propres
mises en évidence par un colorant
approprié, ainsi que l’observation de la
morphologie des érythrocytes et des
plaquettes.

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• Plusieurs colorations sont utilisées,
telles les colorations dérivées de la
méthode de Romanowsky (Wright,
Leishman, Giemsa) et les colorations
panoptiques (Jenner-Giemsa et May-
Grunwald-Giemsa) .

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• le colorant de Wright est surtout utilisé
sur le contient américain ;
• en Grande-Bretagne, on emploie le
colorant le Leishman
• et en France, le colorant de May-
grunwald-Giemsa

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• Ici, la coloration de May-grunwald-
Giemsa et la coloration de Wright sont
les plus répandues. Cette variété de
colorations, selon le pays, explique les
différences de coloration des planches
des livres d’hématologie.

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Coloration de
May-Grunwald-Giemsa

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1. Principe
• Cette méthode panoptique est basée sur
l’emploi successif de deux colorants : Le
May-Grunwald-Giemsa. Le premier fixe
les frottis par son alcool méthylique et
colore les éléments acidophiles et les
granulations spécifiques des leucocytes.
Le second colore surtout les noyaux et
les parties azurophiles.

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2. Matériel et réactifs
• Plateau à coloration
• Chronomètre
• Colorant de May-Grunwald : poudre de May-
Grunwald (disponible dans la commerce) et
méthanol.
• Des solutions de colorants prêtes à l’emploi
sont vendues dans le commerce. On peut
aussi se procurer simplement la poudre de
colorant et la préparer dans les proportions
recommandées par le fabricant.

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• Colorant de Giemsa : poudre de Giemsa
(du commerce), méthanol et glycérine.
• Tampon : tampon phosphate préparé
généralement à partir des solutions
tampons de Sörensen.
• Les colorants sont sensibles à la
concentration en ions hydrogène ; un pH
alcalin accentue le bleu de méthylène
aux dépens de l’éosine et vis versa.

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• Nous recommandons un pH de 7.0.
Cependant, le pH varie selon les utilsateurs.
Nous donnerons donc ici les quantités
requises pour des solutions à pH
différents :
• Solution A:
• KH2PO4 0,066 mol/l 9,1g/l
• Solution B:
• Na2HPO4 0,066 mol/l 9,5g/l ou
Na2HPO42H2O 11,9g/l

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Pour obtenir une solution du pH requis, mélanger
les solutions A et B dans des proportions
suivantes :
pH Solution A Solution B
6.4
6.6
6.8
7.0
7.2
73.0ml
63.0ml
50.8ml
38.9ml
28.0ml
27.0ml
37.0ml
49.2ml
61.1ml
72.0ml

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3. Technique
• 1) Verser sur le frottis 10 à 15 gouttes
de liquide de May-Grunwald de manière
à bien le recouvrir. Laisser agir pendant
3 minutes. Il est essentiel que le liquide
ne sèche pas.

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• 2) Ajouter autant de gouttes de tampon
phosphate que l’on a mis de gouttes de
May-Grunwald. Mélanger en inclinant la
lame en tous sens ou en soufflant dessus
délicatement. Laisser agir pendant 2
minutes.

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• 3) Rejeter le May-Grunwald et, sans
laver, verser du Giemsa dilué dans la
proportion de 3 gouttes pour 2 cm3
d’eau distillée. Laisser agir pendant 20
minutes environ.

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• 4) Laver rapidement sous le jet d’eau. Il
ne faut pas se contenter de rejeter le
colorant, sinon la pellicule irisée du
précipité qui se forme toujours à sa
surface risque d’adhérer au frottis.

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• 5) Faire sécher le frottis par
égouttage ou par ventilation. Ne jamais
chauffer le frottis.
• N.B : Les temps de coloration peuvent
être différents à cause de la
concentration, et de la qualité des
colorants utilisés.

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Coloration de Wright

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1. Principe
• Très utilisé, cette méthode permet une
bonne différenciation des cellules grâce
au colorant de Wright.
• Celui-ci est composé de bleu de
méthylène, d’éosine et d’azur de
méthylène en solution dans le méthanol.

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2. Matériel et réactifs
• Colorant de Wright : il se présente en
solution prête à l’emploi ou en poudre
que l’on dissout dans du méthanol dans
les proportions recommandées par le
fabricant.
• Tampon à pH voisin de 6.8 (voir tampon
préparé pour la coloration de May-
Grunwald-Giemsa).

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3. Technique
• 1) Verser sur le frottis 10 à 15 gouttes
de liquide de Wright de manière à bien le
recouvrir. Laisser agir pendant 3
minutes.
• 2) Ajouter autant de gouttes de tampon
phosphate que l’on a mis de gouttes de
Wright. Laisser agir pendant 6 minutes.
• 3) Laver rapidement sous le jet d’eau et
sécher par égouttage ou ventilation.

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Résultats d’une bonne coloration
Avec la coloration de May-Grunwald-Giemsa :
• Les noyaux sont rouge-violet
(basichromatine) et roses (oxychromatine),
• Les cytoplasmes acidophiles (granulocytes)
sont roses,
• Les cytoplasmes basophiles (lymphocytes et
monocytes) sont bleus,
• Les cytoplasmes polychromatophiles sont
grisâtres avec des zones roses et des zones
bleues,

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• Les granulations neutrophiles sont
marron,
• Les granulations éosinophiles sont
orangées,
• Les granulations basophiles sont violet
foncé,
• Les granulations azurophiles sont violet-
pourpre,
• Les thrombocytes sont visibles et de
teinte rose violacé (lilas)

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Avec la coloration de Wright :
• Le frottis est de couleur rosée uniforme
à l’examen macroscopique,
• Au microscope, les globules rouges sont
roses,
• Les noyaux des leucocytes sont bleu
foncé,
• Les granulations des neutrophiles sont
violet-rose ou lilas,

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• Les granulations des éosinophiles sont
rouge orangé,
• La basichromatine ainsi que
l’oxychromatine du noyau sont
clairement différenciées,
• Les autres éléments sont de la même
couleur que celle qu’on obtient à la
coloration de May-Grunwald-Giemsa.

25. S/Abdessemed
Causes d’erreurs
• Si le frottis est excessivement bleu,
c’est peut-être qu’il est trop épais ou
que le lavage a été insuffisant ou le
temps de coloration trop prolongé, ou
qu’on a utilisé un colorant ou un tampon
excessivement basique.

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• Dans ce cas, les érythrocytes sont
bleus ou verts, le cytoplasmes de
lymphocytes devient gris ou bleu
lavande, les granulations des
éosinophiles deviennent grises ou bleues
et les granulations des neutrophiles
sont très foncées et apparaissent plus
grosses que normalement.

27. S/Abdessemed
• Si le frottis est trop rouge, cela peut
être causé par un colorant ou un tampon
trop acide. Dans ces préparations, la
chromatine du noyau est bleu pale au
lieu d’être bleu foncé, les érythrocytes
sont rouges ou oranges au lieu d’être
roses, et les granulations des
éosinophiles sont rouges brillant alors
que les granulations azurophiles et
neutrophiles sont à peine visibles.

28. S/Abdessemed
• Si les noyaux, les érythrocytes et les
granulations éosinophiles sont pales,
cela est probablement du à un lavage
trop prononcé ou à un temps de
coloration trop court.
• Parfois des précipités apparaissent sur
le frottis ; ce défaut est dû à des lames
malpropres, à un mauvais lavage, à du
colorant séché sur les lames ou à une
filtration inadéquate du colorant.

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Examen des frottis sanguins

30. S/Abdessemed
• On contrôle tout d’abord le frottis à
faible grossissement, de manière à
déterminer la distribution des cellules
ainsi que la qualité de l’étalement et de
la coloration. Si la préparation est jugée
satisfaisante, on dépose une petite
goutte d’huile à immersion sur
l’étalement, puis on met en place
l’objectif à immersion.

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• Il est important de choisir un endroit ou
les érythrocytes sont voisins sans
cependant se toucher.
• Si le frottis est trop épais, les
leucocytes et les érythrocytes sont
petits, et on ne distingue que très peu
les détails morphologiques.

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• Si le frottis est trop mince, les
érythrocytes sont plus grands, et la
distribution de l’hémoglobine semble
plus uniforme que normalement.

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• La répartition des cellules n’est pas
parfaitement égale. Les éléments les
plus petits (lymphocytes) se regroupent
surtout au centre du frottis, les
granulocytes sur les bords et les cellules
plus volumineuses (monocytes) sont
entrainées dans les franges du frottis.

34. S/Abdessemed
• Pendant qu’on exécute la formule
leucocytaire, on doit aussi vérifier les
éléments suivants :
• Les érythrocytes : il faut observer et
apprécier la taille, la forme et la couleur
des érythrocytes, ce qui fournit des
renseignements utiles pour le diagnostic.

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• Avec l’éxpérience, l’observateur peut
déterminer si les globules rouges sont
macrocytaire, normocytaire ou
microcytaire. Le degré de variation de la
taille (anisocytose)est rendu par la
notation 0,+,++,+++ ou ++++.

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• La présence de forme anormales
(codocytes, drépanocytes, elliptocytes,
sphérocytes, etc.) doit être notée. Le
degré de variation de la forme
(poikilocytose) est rendu par les
notations 0 à ++++. Les variations de la
couleur (anisochromie,
hypochromie,polychromatophilie)
doivent aussi être notées et graduées.

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• La présence de corps d’inclusions (corps
de Jolly, ponctuations basophiles,
anneau de Cabot, etc.), de globules
rouges nucléés, de rouleaux d’hématies
doit être indiquée. Tous ces éléments
ont une importance considérable pour le
diagnostic.
• Les thrombocytes : la distribution et la
morphologie des thrombocytes doivent
être observées.

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• L’évaluation du nombre de thrombocytes
est approximative (augmentation
marquée, augmentation modéré, nombre
légèrement augmenté, normal ou
légèrement diminué, diminution modérée
et diminution marquée) et sera confirmé
par la numération dans un hématimètre
si nécessaire.

39. S/Abdessemed
• Pour la morphologie, il est important de
regarder la forme et la taille des
thrombocytes. Sont notées
principalement : l’anisocytose
plaquettaire et les mégaplaquettes.

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• Les leucocytes : en plus d’établir la
formule leucocytaire, on doit noter la
présence de corps d’inclusion
(granulations toxique, corps de Döhle,
corps d’Auer, etc.), de neutophiles
hypersegmentés, de lymphocytes
atypiques, etc.

41. S/AbdessemedS/Abdessemed
Formule leucocytaire

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• But :
La formule leucocytaire permet d’établir
le pourcentage (relatif) de chacun des types
de leucocytes présents.
• Principe :
Il s’agit d’établir le pourcentage en
comptant 100 ou 200 leucocytes et en
distinguant les lignées granulocytaire,
lymphocytaire et monocytaire, les formes
adultes ou jeunes. Chaque leucocyte est
identifié puis compté à l’aide d’un
hémoleucomètre (compteur mécanique).

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Technique :
1) Avec l’objectif à immersion, parcourir
l’ensemble du frottis, sur les bords et au
centre, en évitant les parties trop épaisses ou
trop minces. Comme on l’a vu précédemment, il
est important de parcourir le frottis en tous
sens, à cause de la répartition des diverses
cellules.
2) Chaque leucocyte rencontré est identifié
et compté. Établir ensuite le pourcentage de
chacun des types cellulaires.

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tête queue
film trop épais épaisseur Idéale film trop mince
Corps

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3)A partir du pourcentage, calculer le
nombre absolu de chacun des types si
désiré.
NB : ce calcul est utile lorsque le
nombre de leucocytes ou le pourcentage
de chacun des types de leucocytes est
anormal.

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Causes d’erreurs :
• On peut diminuer l’erreur due au hasard
de la répartition des cellules en
comptant un plus grand nombre de
cellules.
• L’erreur est de l’ordre de +/- 10% si
100 cellules sont comptées et de +/- 7%
si 200 cellules sont comptées.

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